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    攻克ELISA實驗,需要搞定那些問題呢?

    更新時間:2023-12-13    點擊次數:2335

      攻克ELISA實驗,需要搞定那些問題呢?

      ELISA是蛋白定量的金標準,也是免疫學研究中常用的實驗方法之一。很多人覺得ELISA很簡單,其實不然。本生生物帶你了解ELISA實驗中出現的各種問題。

      酶聯免疫吸附實驗

      酶聯免疫吸附(ELISA)用于:

      (1)免疫酶染色各種細胞內成份的定位;

      (2)研究抗酶抗體的合成;

      (3)顯現微量的免疫沉淀反應;

      (4)定量檢測體液中抗原或抗體成份。

      優點:快速、靈敏、定性、定量、定位

      實驗原理

      1.包被:抗原/抗體,固相化

      2.反應: 1)待測抗體/抗原; 2)酶標抗原/抗體

      3.洗滌:使結合在固相上的抗原抗體復合物與未結合的分離

      4.底物顯色:定性/定量分析


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      常用的酶與底物:

      酶底物顯色測定波長辣根過氧化物酶 xidase,HRP鄰b二胺(OPD)橘紅色492nm四甲基聯b胺(TMB)黃色450nm堿性磷酸酶alkaline phosohatase,AP4-硝基酚磷酸鹽(p-NPP)黃色405nm終止液:2mol/L H2SO4

      常用方法

      1.間接法

      檢測抗體的方法, 主要用于對病原體抗體的檢測。

      優勢:二抗可以加強信號,而且有多種選擇能做不同的測定分析。不加酶標記的一級抗體則能保留它最多的免疫反應性。

      缺點:交互反應發生的機率較高

      2.雙抗體夾心法

      檢測大分子抗原常用的方法。

      優勢:高靈敏、高專一性,抗原無須事先純化。

      缺點:抗原一定得擁有兩個以上的抗體結合部位。

      3.競爭法

      檢測小分子半抗原(藥物、激素等)。

      優勢:可適用比較不純的樣本,而且數據再現性很高。

      缺點:整體的敏感性和專一性都較差。

      常見問題分析

      Q1.標曲不顯色或顯色很弱,樣本顯色

      溶解標準品以及倍比稀釋時,未渦旋震蕩或不夠充分。

      標準品溶解、倍比稀釋時均需要渦旋震蕩以保證充分混勻。單純依靠移液器反復吹打,效率較低、效果也不一定最佳。

      Q2.標曲和樣本均不顯色

      在孵育階段靜置在桌面上,這樣非常不利于抗原抗體之間的充分接觸,導致顯色偏弱。

      推薦孵育階段,使用ELISA專用的微孔板振蕩器,調至合適的頻率,使抗原抗體充分接觸,保證結合效果。如果排除上述原因,有可能是漏加了某個組分,如檢測抗體、酶等。對于比較馬虎的新手,一定要做好標記和記錄,或者使用添加染料的ELISA試劑盒。

      Q3.標曲顯色,樣本不顯色

      當樣本中目的蛋白濃度極低或者樣本中干擾因素較強,就無法檢測到。目前ELISA仍然是蛋白檢測靈敏度最高的方法,與不同技術結合后,衍生出了多種類型的ELISA,提高了檢測靈敏度。

      對于目的蛋白濃度特別低的樣本,可以嘗試用高敏ELISA,但這也并不意味著一定能檢測到樣本濃度,只能說可以提高樣本的可測率,并使結果更加可靠。因為通常用普通ELISA檢測的樣本OD值都偏低,而高敏ELISA可提高樣本OD值,使之盡量位于標曲范圍內,得到的數值也更加可信。

      Q4.標曲和樣本都顯色,但復孔的CV大

      這個問題就跟移液器和實驗者的操作有關了。移液器的使用維護不規范,就會造成移液的誤差較大;實驗者自身的操作習慣、加樣的一致性對復孔的CV也有很大影響。

      掌握移液器的正確使用和維護。關于個人的操作可練習移液動作、加快速度,確保移液的精密度。

      Q5.本底偏高,樣本值測不到

      標曲的本底即Blank孔的OD值一般要求控制在0.1以下(對于高敏ELISA可以適當放寬要求)。尤其是樣本值特別低的時候,本底過高會掩蓋目的信號,導致無法測到樣本值。

      在加入TMB顯色后,需實時觀察標曲顯色情況。通常在S5孔有肉眼可見的微弱藍色,即可終止反應。

      Q6.樣本經不同梯度稀釋,計算得到的樣本值差異較大

      有時候我們不清楚樣本中目的蛋白的濃度如何,應該如何稀釋,那么我們就會做下預實驗,確定稀釋倍數。然而有時候同一樣本做了幾個不同梯度稀釋后,計算得到的樣本值之間差異較大,應該選擇哪一個稀釋倍數呢?

      這里涉及到了基質效應。通常血清樣本加樣量較高時,血清中的各種蛋白會抑制抗原抗體的接觸,基質效應較明顯。而經過稀釋后,干擾因素也隨之稀釋,影響就會較小。當某兩個梯度稀釋后,計算得到的樣本值接近時,我們就可以認為在該稀釋梯度時,樣本中的干擾因素影響較小,計算得到的值也是接近真實的。然而這樣的稀釋是針對目的蛋白濃度較高的樣本而言。對于濃度很低的樣本,經過多倍稀釋后,就更加測不到了,此時可按照廠家說明書推薦的加樣方式操作。

      Q7.不同試劑盒中的組分能否通用

      除非是公用的試劑如洗液、檢測緩沖液,其它組分不建議用其它試劑盒的組分,甚至是同一指標不同批次的試劑盒里的組分。這些組分(包括標準品、標準品稀釋液、檢測抗體、酶等)都是經過優化的,如果貿然使用其它試劑盒的組分,有可能對結果產生影響。

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